Bilgi

Çiftlik için en az dikkat gerektiren hangi besleyici böcekler var?

Çiftlik için en az dikkat gerektiren hangi besleyici böcekler var?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Çiftlik için en az dikkat gerektiren hangi besleyici böcekler var? Basitçe, kendi kendini düzenleyen bir şekilde otomatikleştirmek istiyorum.

Düzenleme: Ayrıntı eklemek için, böceklerin büyük bir tankta yoğun bir şekilde yaşayacağını ve dışarıdan izole edileceğini hayal ediyorum. Onlar üreyebilecek ve aynı zamanda çoğalabilen, hatta gerekirse bir hava bitkisi olabilen, böcekler tarafından yenen, ölü böcekler ya bitkiyi beslemek için geri dönen ya da terk eden bir bitki ile birlikte var olacaklardı. bir huni aracılığıyla, su da buharlaşır ve tankın içine yağmur olarak düşer.

Fikir, insan çabası olmadan yiyecek üretmektir. Bu, jetonla çalışan, kullanımı çok ucuz bir otomat şeklinde olabilir. Böcekler sıkıştırılabilir ve dağıtılacak bir blok halinde kurutulabilir, belki bir çubuk gibi, makine güneş enerjisiyle çalıştırılabilir.


yaprak kesici karınca saldırı laevigata olarak bilinen Kolombiya'da popüler bir inceliktir. hormiga culona (koca karınca). Karıncalar genellikle tuzlanır ve kızartılır ve patlamış mısırla (görüntü kaynağı) benzer bir mutfak rolü oynar (bana söylendi):

Onları yetiştirmenin ne kadar zor olduğuna tanıklık edemem, ancak yenilebilir olanları seçmek bir zorluk olacaktır. Görünüşe göre, sadece kraliçeler yenilebilir.


ipekböceği Bombyx mori ipek için yetiştirilir, ancak pupalar da Uzak Doğu'da yenir. Bu böcekler (larvalar) yüzyıllardır evcilleştirildiklerinden, onları yetiştirmek için köklü prosedürler vardır.


Yenilebilir Böcek Yetiştiriciliği: Çiftlik Hayvanları ve Mahsullerle Karşılaştırıldığında Aile Geçimi, Gıda Güvenliği ve Çevre Üzerindeki Verimlilik ve Etki

Endüstriyel Perspektif

Birçok böcek doğada yalnızca belirli mevsimlerde veya aylarda bulunabildiğinden, kapalı veya kapalı bir ortamda böcek yetiştiriciliği, gıdayı yıl boyunca sürekli olarak kullanılabilir hale getirmenin önemli bir yoludur. Gıda arzını iyileştirmek ve çevresel etkiyi azaltmak için böcek ve böcek bazlı gıda üretimi ve maksimum etki için kullanımın ölçeğini (hem de daha düşük maliyeti) ve verimliliğini artırmak özellikle önemlidir. Bu özellikle kentsel nüfus için önemlidir. Gıda arzının azalacağı, devlet yardımlarının daha kısıtlı hale geleceği ve insan nüfusunun artmaya devam edeceği ve ciddi bir hayatta kalma tehdidi oluşturacağı için bu konu önümüzdeki yıllarda daha da önem kazanacaktır. Yetersiz beslenen ve beslenmeyen düşük gelirli insanların sayısı hem kırsal hem de kentsel alanlarda artacaktır. Aslında, bu anomalileri tedavi etmek için gereken miktar, önlemeden çok daha fazladır. Çeşitli endüstriyel böcek kitle yetiştirme teknikleri hakkında ayrıntılı bir tartışma için Bölüm 6'ya bakın.

Kapalı alanda yetiştirme için, uygun böcek büyümesi ve gelişimi için ortam çevresel kontrolü (sıcaklık, bağıl nem, fotoperiyot), kaliteli yem ve parazitoitlerin ve hastalıkların önlenmesi gereklidir. Protein, vitamin ve temel besinleri içeren ürünlerle yem biyo-takviyesi, daha iyi seri üretim için ipekböceklerinin yetiştirilmesi için tavsiye edilmiştir (Gahukar, 2014). Bu gibi durumlarda, teknik denetim altında yenilebilir türlerin sürekli ve yoğun bir şekilde yetiştirilmesi gerçekleştirilebilir. Tayland'da yaklaşık 20.000 orta ve büyük ölçekli işletme cırcır böceği, çekirge ve diğer böceklerin yetiştirilmesinde başarılıdır (Hanboonsong ve diğerleri, 2013). Protein üretimi ve sürdürülebilirliği, herhangi bir böcek üretim sisteminin verimliliğine, protein katkısının kalitesine ve miktarına ve böcek diyetlerinin kalitesi tarafından belirlenen ekolojik etkiye bağlıdır (Lundy ve Parrella, 2015).

Dünya çapında, böcek yetiştiriciliği hala manueldir. Büyük ölçekli kriket, yemek kurdu ve balmumu kurdu [Galleria mellonella L.] üretimi ve bazı biyokontrol türleri (özellikle sinekler), ABD ve Avrupa'da yaygın olarak kullanılmaktadır. Bu endüstrilerden bazıları, gelişmekte olan böcek bazlı gıda endüstrisinin temelini oluşturmaktadır. Yeni stratejilerin konsepti ve uygulamaları, şimdi böcek ürünlerinin sanayileşmesine doğru ilerliyor ve ilerliyor. Şu anda, birkaç sanayi kuruluşu, böcek yetiştiriciliği için çeşitli gelişim aşamalarındadır. Büyük ölçekli üretim için böcek biyolojisi araştırmaları, uygun yetiştirme koşulları ve diyet formülleri gibi kritik unsurlar gereklidir. Ticari seri üretime ulaşmak için, mevcut çiftçilik sistemlerinin, hayvancılıktan et üretimi ile ekonomik olarak rekabet edebilmelerini sağlamak için bazı kilit süreçlerin otomasyonuna ihtiyacı var.


Çiftliklerdeki Sinekleri Kontrol Etme

Sinekler sadece bir baş belası değil, dünya çapında hastalıkların ve ekonomik sıkıntıların başlıca nedenidir. Hepsine göre, tifo, dizanteri, kolera, cüzzam ve tüberküloz dahil olmak üzere 65'ten fazla hastalığın sadece insanlara bulaşmasında rol oynadığı biliniyor. Çiftlik eti ve süt ürünlerinin üretimindeki önemli düşüşlerden de sorumludurlar. Milyarlarca dolar ile ölçülen küresel hayvancılık ve kümes hayvanı üretim kayıplarından sineklerin sorumlu olduğu tahmin ediliyor. Modern hayvancılık ve kümes hayvancılığı yöntemleri genellikle sinekler için ideal bir üreme ortamı sağlayarak kontrolü büyük bir zorluk haline getirir.

Tüm sinekler dört yaşam evresinden geçer: yumurta, larva (kurtçuk), pupa ve yetişkin. Bir karasinek dişi yaklaşık 30 günlük yaşam döngüsü boyunca 1000'e kadar yumurta bırakabilir. Bu yumurtalar nemli gübre veya herhangi bir nemli çürük veya çürüyen organik madde üzerine bırakılır. Yumurtalar 10 ila 12 saat içinde yumurtadan çıkar ve kurtçuklar ıslak gübreye geçer. Sinek kurtçukları, ılık nemli koşullar altında 4 ila 5 gün içinde olgunlaşır. Gübrenin daha kuru kısımlarında pupa dönemi meydana gelir ve yetişkin sinekler 3 ila 5 gün içinde ortaya çıkar. İdeal koşullar altında bir ev sineği yaşam döngüsünü 9 ila 14 gün arasında tamamlayabilir. Yaşam döngüsü, daha soğuk sıcaklıklarda çok daha uzun olabilir. Birkaç kilometreye kadar hareket edebilmelerine rağmen, karasinekler normalde üreme alanlarından bir buçuk ila dörtte üç mil uzakta hareket etmezler.

Mandıra binalarının etrafındaki sinekler, nemli gübre veya diğer ıslak çürüyen organik maddelerde gelişir. Kötü sıhhi koşullar altında hiçbir böcek ilacının sinekleri kontrol etmesi beklenemez. Hayvancılık binalarının içinde ve çevresinde sinek popülasyonlarını tutmak için kapsamlı bir sanitasyon programı şarttır.

(a) Hayvan ağıllarındaki tüm gübreyi mümkün olduğunca sık çıkarın. İçlerinde hayvan bulunan buzağı ve boğa ağılları özel dikkat gerektirir. Bu kalemleri haftada bir temizlemek en iyisidir. Hayvan yataklarında diğer malzemeler yerine talaş kullanılması sinek gelişimini azaltır. Temiz bir çiftlik hayvanı ahırında daha az sinek sorunu olur.

(b) Uçan yumurtaların ve larvaların kurutularak öldürülmesi için gübreyi dışarıya ince bir şekilde yayın veya bu atıkları istifleyin ve siyah, plastik bir muşamba ile örtün.

(c) Silaj sızıntı alanlarını, ıslak altlığı, gübre yığınlarını, eski ıslak saman veya saman balyalarını ve çiftliğin herhangi bir yerinde sinekleri çekebilecek diğer organik madde birikimlerini ortadan kaldırın. Yemliklerin uçlarında kalan ıslak yemler sinekleri besleyecektir.

(d) Ahırlarda uygun drenaj sağlayın. Hayvancılık alanlarındaki alçak noktaları ortadan kaldırmak için temiz çakıl ve diğer dolguları kullanın. Uygun sınıflandırma ve döşeme, ıslak ahırları azaltabilir. Su oluklarını ve hidrantları sızdırmaz tutun.

Entegre Zararlı Yönetimi

Sinekleri kontrol etmede başarılı olmak için üreticilerin kendi operasyonlarına en uygun kontrol programını uygulamaları önemlidir. Tek bir uygulamaya veya pestisit ürününe güvenmek, etkili ve ekonomik haşere kontrolü elde etmek için en iyi yaklaşım değildir. Daha iyi bir yaklaşım, sinekler sorun olduğunda, yemler, artık spreyler, uzay spreyleri ve larvisitler gibi çeşitli pestisit stratejileriyle rutin sanitasyonun birleştirilmesidir. Ağır sinek popülasyonlarının oluşmasını beklemeyin. Sinek popülasyonlarının mevsim başında artmasını önlemek, kabul edilemez yoğunluk seviyelerine ulaştıktan sonra onları kontrol etmeye çalışmaktan çok daha kolay ve daha ucuzdur. Sinek popülasyonları artmaya başladığında, zaman ayırın ve gerektiği gibi tedavi edin.

Bir sonraki savunma hattı, binaların dışına ve içine uygulanan artık spreylerdir. Larvisitler, uzay spreyleri ve yemlerin uygulanması gibi diğer uygulamalar, sanitasyon ve artık spreylere ek olarak düşünülmelidir. Artık spreyler duvarlara, tavanlara, bölmelere, payandalara, direklere ve diğer sinek dinlenme yerlerine uygulanır. Bu spreyler dikme ahırlarında, iniş ve dinlenme yüzeylerinin minimum olduğu açık ahırlara göre çok daha etkilidir. Ayrıca, ahır yüzeyleri, onlara uygulanması gereken sprey miktarına göre değişir. Pürüzsüz yüzeyler, pürüzlü, gözenekli yüzeylere göre daha az püskürtme gerektirir. Yüzeyi, inç kare başına 80 ila 100 lb'lik düşük basınçlarda akış noktasına kadar iyice ıslatın. Yemi, içme suyunu, sütü, sağım araçlarını ve süt odalarını kirletmekten kaçının. Önemi tam olarak etikete göre talimatları izleyin herhangi bir pestisit kullanırken yeterince stresli olamaz.

Uzun Süreli Kalıntı Tedaviler

(a) Fenvalerat [%10]. Bu ürün yalnızca domuz veya at binalarında öncül sprey olarak kullanılmak üzere etiketlenmiştir. 1 litre ürünü 10 galon suya karıştırın ve 750 fit kare başına 1 gal sprey oranında uygulayın. Püskürtmeden önce hayvanları uzaklaştırın. Hayvanları işlenmiş binalardan en az 4 saat uzak tutun. Yapamaz yem veya içme suyunun kirlenmesine izin vermeyin.

(b) Permetrin [%25]. Bu ürün süt odalarında kullanım için etiketlenmemiştir. 6.67 oz ürünü 10 galon suda karıştırın ve 1.000 fit kare başına 1 gal sprey oranında uygulayın. Yapamaz hayvanlara, yemlere veya içme suyuna doğrudan uygulama yapın.

(c) Permetrin [%10]. 1 qt ürünü 25 galon suya karıştırın ve 750 fit kareye 1 gal sprey oranında uygulayın. Ahırlarda, mandıra ahırlarında, yemliklerde, ahırlarda ve kümeslerde kullanılabilir.

(d) Permetrin. Bu ve diğer permetrin ürünleriyle ilgili talimatlar için etikete bakın.

(e) Tetraklorvinfos [%50]. Etikete göre yönergeleri izleyin. Püskürtmeden önce buzağıları ve emziren hayvanları çıkarın. Onları en az 4 saat boyunca işlenmiş binalardan uzak tutun. Yapamaz yem veya içme suyunun kirlenmesine izin vermeyin. Süt ahırlarında, kümeslerde, domuz binalarında ve diğer hayvan binalarında kullanılabilir.

(f) Tetraklorvinfos [23] ve diklorvos [5,3]. 1 gal ürünü 25 gal suya (veya aşırı istilalar için 12,5 gal suya 1 gal ürün) karıştırın ve 500 ila 1.000 fit kare duvar, tavan veya diğer alanlara 1 gal sprey oranında uygulayın. sinekler dinlenir veya toplanır. Püskürtmeden önce hayvanları çıkarın. Hayvanları işlenmiş binalardan en az 4 saat uzak tutun. Yapamaz yem veya içme suyunun kirlenmesine izin vermeyin. Süt ahırlarında, kümeslerde, domuz binalarında, hayvan barınaklarında ve diğer hayvan binalarında kullanılabilir.

Orta Vadeli Rezidüel Tedaviler

Deltametrin [%0.02]. Hayvancılık ve at tesislerinde ahır sineklerini, boynuz ve yüz sineklerini, ev sineklerini, geyik sineklerini, sivrisinekleri ve sivrisinekleri kontrol eder. Islak olana kadar yüzeylere iyice uygulayın. Gerektiği kadar uygulayın, ancak haftada bir kereden fazla değil. Hayvanlara veya insanlara püskürtmeyin. Yemi veya içme suyunu kirletmeyin. Süt odası veya sağımhanede kullanmayınız.

Kısa Süreli Rezidüel Tedaviler

(a) Diklorvos [43.2%]. 1 gal ürünü 100 gal su içinde karıştırarak %0.5'lik bir çözelti hazırlayın ve genel bir öncül uygulama olarak seyreltilmiş sprey uygulayın. Sineklerin toplandığı alanlara özellikle dikkat edilmelidir. Tedavi sırasında hayvanlar bulunabilir. Yapamaz yem, su veya gıda maddelerinin, sütün veya sağım gereçlerinin kontamine olmasına izin vermeyin. Sığır besi alanlarına, stok sahalarına, ahırlara ve ağıllara uygulayın.

(b) Naled [%58]. Etikete göre yönergeleri izleyin.

(c) Piretrinler [0.1%] ve piperonil bütoksit [1.0%]. Etikete göre yönergeleri izleyin. Ahırlarda, süt odalarında ve mandıralarda karasineklerin, ahır sineklerinin ve boynuz sineklerin hızlı bir şekilde öldürülmesi ve öldürülmesi için uzay spreyi olarak uygulayın.

(d) Piretrinler [0.5%] ve piperonil bütoksit [%4.0]. Hayvancılık, mandıra, domuz ve kümes hayvanı tesislerinde ahır sineklerini ve diğer sinekleri, sivrisinekleri, pireleri ve yaban arılarını kontrol eder. Tüm pencereleri ve kapıları kapatın ve 2 ila 3 saniye/1.000 fit küp alan oranında uygulayın. Tedavi edilen alanda kalmayın ve 15 dakika sonra tedavi edilen alanı iyice havalandırın.

Taze yemler sinekleri kontrol etmeye yardımcı olsa da, sinek üremesi aşırı ise sonuçlar kötü olabilir. Tüm zemin çöpü ve gübresi temizlendikten sonra yem uygulanması önerilir. En iyi kontrol için yemleri bolca kullanın ve gerektiği kadar tekrarlayın. Sinekler yoğun olarak ürerken miktarları artırmak gerekebilir, ancak herhangi bir yem ürününün doğru kullanım talimatları için etiketi kontrol edin. Yemler, diğer kontrol önlemleriyle birlikte kullanıldığında en etkilidir. Hayvanların kayabileceği ve düşebileceği veya çocukların yemle temas edebileceği alanlarda yem kullanmayın.

(a) Metomil [1%]. Karıştırma gerekmez. Yem sadece yemliklerin, etlik kümeslerin, hayvan ahırlarının dış kısımlarında ve kafesli yumurta kümeslerinde yürüme yollarında kullanılabilir. Parçacıklar arasında 1 ila 2 inçlik aralıklarla 500 fit kare sinek besleme alanı başına yaklaşık 0,25 lb oranında yemi dağıtın (yığınlar halinde koymayın). Yapamaz gıda üreten hayvanların tedavi edilen alanlara erişmesine izin verin. Yapamaz yem veya içme suyunun kirlenmesine izin vermeyin.

(b) Metomil [%1] ve (Z)-9-Trikozen [%0.025]. Kullanım talimatları için etikete bakın.

Uzay spreyleri veya aerosoller, yetişkin sineklerin hızlı bir şekilde yere serilmesi ve öldürülmesi için etkili olabilir. Hava hareketini mümkün olduğunca azaltmak önemlidir. Etikete göre yönergeleri izleyin.

(a) Piretrinler [0.1%] ve piperonil bütoksit [1.0%]. Püskürtmeden önce kapıları ve pencereleri kapatın. Alan sisle dolana kadar spreyi tavana ve üst köşelere yönlendirerek sis veya ince sis olarak uygulayın. 1,000 cu ft başına yaklaşık 0,5 oz solüsyon kullanın. Sisin hayvanların üzerine yerleşmesine izin verin. Tedaviden sonra odayı 5 dakika kapalı bırakın, tekrar doldurmadan önce alanı havalandırmayı unutmayın. Gerektiği kadar tekrarlayın. Sağımdan önce süt hayvanlarının memelerini yıkayın. ABD Maden Bürosu tarafından önerilen türden bir maske veya solunum cihazı takarak dumanları solumaktan kaçının.

(b) Diklorvos [23.4%]. 8.000 cu ft başına 1 litre %0.5 solüsyon oranında sisleme veya buğulama ile uygulayın. Uygulamadan önce hava hareketini mümkün olduğunca azaltın. Hayvanlara 8 saat içerisinde direkt uygulama yapılan alanlarda kullanmayınız. Yapamaz yem, su, süt veya sağım gereçlerinin kirlenmesine izin vermeyin.

(c) Diklorvos reçine şeritleri. Etikette belirtildiği gibi tavandan asın. 1000 cu ft başına 1 şerit kullanın. Bu şeritler en iyi kapalı odalarda çalışır. Yapamaz su veya yem üzerine yerleştirin. Şeritleri hayvanlardan ve çocuklardan uzak tutun.

(d) Spinosad [%2,46]. Kümes hayvanları, sığır eti, mandıra, at, domuz ve koyun tesisleri dahil olmak üzere hayvan tesislerinde ahır ve ev sineklerinin kontrolü için seyreltilebilir sprey. Yapamaz ürünü sağım odasında veya süt odasında uygulayınız. 5 galon suya 20 oz ürün karıştırın ve 500 ila 1.000 fit kare başına 1 gal solüsyon oranında uygulayın. Yapamaz havai sprinkler sisteminde kullanın. Daha fazla talimat için etikete bakın.

Cyromazine, tetrachlorvinphos ve diflubenzuron [%9.7] gibi oral larvisitlerin kullanımı tüm eyaletlerde yasal değildir. Bu yem katkı maddeleri ve boluslar, çok yaygın olarak kullanılmadıkça genellikle uçuş kontrolüne cevap değildir. Sinek popülasyonunu etkili bir şekilde azaltmak için tüm gübre bir alan içinde işlenmelidir. Çoğu durumda, alan çok büyük olmalıdır, çünkü sinekler geniş coğrafi bölgelerde bir sürüden diğerine hızla hareket eder.

Oral larvisitler, gübrede sineklerin gelişmesini engelleyerek çalışır. Mevcut yetişkin sineklere karşı etkili değildirler ve düzenli bir gübre sanitasyon uygulaması ile birlikte kullanılmalıdırlar. Sineklerin işlenmemiş hayvanlardan veya diğer organik kaynaklardan elde edilen gübrede ürediği durumlarda ek sinek kontrolü sıklıkla gereklidir.

(a) Diflubenzuron [%9.7]. Bu ürün, sığır ve süt sığırları için kontrollü salımlı bir bolustur.
ev ve ahır sineklerinin bastırılmasına yardımcı olur. 300 ila 550 lb ağırlığındaki sığırlara 1/2 bolus ve 550 ila 1.100 lb veya daha fazla ağırlığındaki sığırlara 1 bolus uygulayın. Yapamaz300 lb'den daha hafif olan sığırlara uygulayınız. Herhangi bir hayvana ASLA 1 bolustan fazla uygulamayınız.

(b) Tetraklorvinfos [97.3%]. Etikete göre yönergeleri izleyin. Besi sığırları ve emziren süt sığırları için, 70 mg ürün/100 libre vücut ağırlığı oranında besleyin. Erken ilkbaharda, sinekler görünmeye başlamadan önce beslenmeye başlayın ve yaz boyunca devam edin ve soğuk havalar sinek aktivitesini kısıtlayana kadar sonbaharda devam edin.

(a) Tetraklorvinfos [23] ve diklorvos [5,3]. 1 galon ürünü 25 galon suya karıştırın ve her 100 fit kareye 1 gal sprey oranında uygulayın. 7-10 günlük aralıklarla dışkılar birikmeye başlayana kadar tekrarlayın, ardından sadece "sıcak noktalar" (çok sayıda kurtçuk bulunan küçük alanlar) ile tedavi edin. Kanatlı ve hayvancılık tesislerinde kullanılabilir. Yapamaz hayvanları doğrudan püskürtün. Yapamaz yemi veya içme suyunu kontamine edin.

(b) Tetraklorvinfos [%50]. 100 fit kare kümes hayvanı dışkısı, gübre yığını vb. başına 1 gal %1'lik solüsyon oranında uygulayın. Kontrol sağlanana kadar her 7 ila 10 günde bir tekrarlayın. Yapamaz hayvanları doğrudan püskürtün. Yapamaz yemi veya içme suyunu kontamine edin.

Mineral Karışımlar ve Yem Katkıları

S-metopren [%10.5 ve diğer formülasyonlar]. Altosid Sığır Özel Karıştırma Premiksindeki Al, tedavi edilen sığırların gübresindeki boynuz sineğinin (ve muhtemelen diğer pislik üreten sinek türlerinin) gelişimini engelleyen bir böcek büyüme düzenleyicisidir (IGR). İlkbaharda, sığırlarda boynuz sinekler görünmeden önce kullanmaya başlayın ve soğuk hava boynuz sinek aktivitesini kısıtlayana kadar beslemeye devam edin. Ürün, damızlık sığırlar, süt veren sığırlar ve buzağılar dahil olmak üzere, sığır ve süt sığırları için güvenlidir. Ürün, süt kesilmeden kesime ve laktasyondaki süt ineklerine beslenebilir. Uygun besleme/ağırlık karıştırma oranlarıyla ilgili ayrıntılar için etikete bakın.

Çevre Bölge Tedavileri

Sitrik Asit ve kristalize propantrikarboksilik asit [100%]. Tedavi alanının metrekaresi başına 1/8 fincan uygulayın. Uygulama sonrası uygulama alanı orta derecede tuzlu bir görünüme sahip olmalıdır. Uçuş sezonunda 7 günde bir uygulayın. Belirli alan uygulamaları için etikete bakın.


İçindekiler

"Omurgasız" kelimesi Latince kelimeden gelir. omur, genel olarak bir eklem ve bazen özel olarak bir omurgalı omurgasından bir eklem anlamına gelir. birleşik yönü omur kökte ifade edilen tornalama kavramından türetilmiştir. verto veya girdap, çevirmek. [5] Ön ek içinde- "yok" veya "olmadan" anlamına gelir. [6]

Dönem omurgasızlar bir taksonu Arthropoda, Vertebrata veya Manidae ile aynı şekilde doğru bir şekilde tanımlamadığından biyolog olmayanlar arasında her zaman kesin değildir. Bu terimlerin her biri geçerli bir takson, şube, alt filum veya aileyi tanımlar. "Omurgasızlar" bir kolaylık terimidir, bir takson değil, Chordata dışında çok az sınırlayıcı öneme sahiptir. Bir alt filum olarak Vertebrata, Metazoa'nın o kadar küçük bir bölümünü içerir ki, Animalia krallığından "Vertebrata" ve "Omurgasız" terimleriyle bahsetmek sınırlı pratikliğe sahiptir. Animalia'nın daha resmi taksonomisinde, bir kladogram oluştururken mantıksal olarak vertebral kolonun varlığından veya yokluğundan önce gelmesi gereken diğer özellikler, örneğin bir notokord varlığı. Bu en azından Chordata'yı sınırlar. Bununla birlikte, notokord bile embriyolojik gelişim ve simetri [7] veya belki de bauplan yönlerinden daha az temel bir kriter olacaktır. [8]

Buna rağmen, kavram omurgasızlar bir hayvan taksonu olarak, meslekten olmayanlar arasında bir yüzyıldan fazla bir süredir varlığını sürdürmektedir [9] ve zoolojik topluluk içinde ve literatüründe, Omurgalılar üyesi olmayan hayvanlar için bir kolaylık terimi olarak kullanılmaya devam etmektedir. [10] Aşağıdaki metin, terimin ve onu oluşturan hayvanların daha önceki bilimsel anlayışını yansıtmaktadır. Bu anlayışa göre, omurgasızlar ne içte ne de dışta bir kemik iskeletine sahip değillerdir. Çok çeşitli vücut planları içerirler. Birçoğunun denizanası veya solucanlar gibi sıvı dolu, hidrostatik iskeletleri vardır. Diğerlerinin sert dış iskeletleri, böceklerin ve kabuklularınki gibi dış kabukları vardır. En tanıdık omurgasızlar arasında Protozoa, Porifera, Coelenterata, Platyhelminthes, Nematoda, Annelida, Echinodermata, Mollusca ve Arthropoda bulunur. Arthropoda böcekleri, kabukluları ve örümcekleri içerir.

Açık farkla açıklanan en fazla sayıda omurgasız türü böceklerdir. Aşağıdaki tablo, IUCN Kırmızı Tehdit Altındaki Türler Listesi'nde tahmin edildiği gibi, ana omurgasız grupları için tanımlanmış mevcut türlerin sayısını listeler., 2014.3. [11]

IUCN, 66.178 mevcut omurgalı türünün tanımlandığını tahmin etmektedir, [11] bu, dünyada tanımlanan hayvan türlerinin %95'inden fazlasının omurgasız olduğu anlamına gelir.

Tüm omurgasızlar için ortak olan özellik, bir omur sütununun (omurga) olmamasıdır: bu, omurgasızlar ve omurgalılar arasında bir ayrım yaratır. Bu ayrım, yalnızca, herhangi bir açık biyolojik olarak homolog özelliğe dayalı değildir; kanatlara sahip olmanın işlevsel olarak böcekleri, yarasaları ve kuşları birleştirmesinden ya da kanatlara sahip olmamanın kaplumbağaları, salyangozları ve süngerleri birleştirmesinden daha fazla temel almaz. Hayvanlar olarak omurgasızlar heterotroflardır ve diğer organizmaların tüketimi şeklinde beslenmeye ihtiyaç duyarlar. Porifera gibi birkaç istisna dışında, omurgasızlar genellikle farklılaşmış dokulardan oluşan vücutlara sahiptir. Ayrıca tipik olarak dışarıya bir veya iki açıklığı olan bir sindirim odası da vardır.

Morfoloji ve simetri

Çoğu çok hücreli organizmanın vücut planları, ister radyal, ister iki taraflı veya küresel olsun, bir tür simetri sergiler. Ancak bir azınlık simetri göstermez. Asimetrik omurgasızlara bir örnek, tüm karındanbacaklı türlerini içerir. Bu, salyangozlarda ve sarmal kabuğa sahip deniz salyangozlarında kolayca görülür. Salyangozlar dışarıdan simetrik görünür, ancak pnömostomları (solunum deliği) sağ tarafta bulunur. Diğer gastropodlar, olgunlaştıkça asimetrik cerata geliştiren Glaucus atlanticus gibi dış asimetri geliştirir. Gastropod asimetrisinin kökeni bilimsel bir tartışma konusudur. [12]

Diğer asimetri örnekleri, kemancı yengeçlerde ve keşiş yengeçlerinde bulunur. Genellikle diğerinden çok daha büyük bir pençeleri vardır. Bir erkek kemancı büyük pençesini kaybederse, tüy döktükten sonra karşı tarafta başka bir pençe çıkar. Süngerler gibi sapsız hayvanlar asimetriktir [13] mercan kolonileri yanında (radyal simetri sergileyen tek tek polipler hariç), kerpeten içermeyen alpheidae pençeleri ve bazı kopepodlar, poliopisthokotileanlar ve solungaç odacığı içinde tutunma veya ikamet yoluyla parazitleşen monogeneanlar. onların balıkları).

Gergin sistem

Nöronlar omurgasızlarda memeli hücrelerinden farklıdır. Omurgasız hücreleri, doku travması, yüksek sıcaklık veya pH'daki değişiklikler gibi memelilerle benzer uyaranlara yanıt olarak ateşlenir. Bir nöron hücresinin tanımlandığı ilk omurgasız, tıbbi sülüktü. Hirudo şifalı. [14] [15]

Deniz tavşanında nosiseptörleri kullanarak öğrenme ve hafıza, Aplizi tarif edilmiş. [16] [17] [18] Mollusk nöronları artan basınçları ve doku travmasını tespit edebilmektedir. [19]

Nöronlar, annelidler, yumuşakçalar, nematodlar ve eklembacaklılar dahil olmak üzere çok çeşitli omurgasız türlerinde tanımlanmıştır. [20] [21]

Solunum sistemi

Bir tür omurgasız solunum sistemi, karasal eklembacaklıların metabolik gazları dokulara ve dokulardan taşımak zorunda olduğu spiracles, trakea ve trakeollerden oluşan açık solunum sistemidir. [22] Spiracle'ların dağılımı, birçok böcek türü arasında büyük ölçüde değişebilir, ancak genel olarak vücudun her segmentinde, her biri bir atriyuma bağlanan ve arkasında nispeten büyük bir trakeal tüp bulunan yalnızca bir çift spiracles olabilir. Trakea, çapı sadece birkaç mikrometreden 0.8 mm'ye kadar olan, vücut boyunca dallanan (anastomoz) kütiküler dış iskeletin invaginasyonlarıdır. En küçük tüpler, trakeoller, hücrelere nüfuz eder ve su, oksijen ve karbondioksit için difüzyon bölgeleri olarak hizmet eder. Gaz, aktif havalandırma veya pasif difüzyon yoluyla solunum sistemi yoluyla iletilebilir. Omurgalıların aksine, böcekler genellikle hemolenflerinde oksijen taşımazlar. [23]

Bir trakeal tüp, halkalar veya sarmallar gibi çeşitli geometrilerde sırt benzeri çevresel taenidia halkaları içerebilir. Başta, göğüste veya karında trakea hava keselerine de bağlı olabilir. Karınlarındaki hava keselerini aktif olarak pompalayan çekirge ve arı gibi birçok böcek, vücutlarındaki hava akışını kontrol edebilmektedir. Bazı suda yaşayan böceklerde, soluk borusu vücut duvarından bir solungaç şeklinde doğrudan gaz alışverişi yapar veya bir plastron aracılığıyla esasen normal olarak işlev görür. Eklem bacaklıların soluk borusunun iç olmasına rağmen tüy dökme (ekdiz) sırasında döküldüğüne dikkat edin. [24]

Üreme

Omurgalılar gibi çoğu omurgasız da en azından kısmen cinsel üreme yoluyla çoğalır. Daha küçük, hareketli spermatozoa veya daha büyük, hareketsiz yumurta üretmek için mayoz bölünme geçiren özel üreme hücreleri üretirler. [25] Bunlar birleşerek yeni bireylere dönüşen zigotları oluşturur. [26] Diğerleri eşeysiz üreme veya bazen her iki üreme yöntemine de sahiptir.

Sosyal etkileşim

Sosyal davranış, hamamböceği, termitler, yaprak bitleri, thrips, karıncalar, arılar, Passalidae, Acari, örümcekler ve daha fazlası dahil olmak üzere omurgasızlarda yaygındır. [27] Sosyal etkileşim özellikle ösosyal türlerde belirgindir ancak diğer omurgasızlar için de geçerlidir.

Böcekler, diğer böcekler tarafından iletilen bilgileri tanır. [28] [29] [30]

Filum

Omurgasızlar terimi birkaç filumu kapsar. Bunlardan biri süngerlerdir (Porifera). Uzun zamandır diğer hayvanlardan erken ayrıldıkları düşünülüyordu. [31] Diğer filumların çoğunda bulunan karmaşık organizasyondan yoksundurlar. [32] Hücreleri farklılaşmıştır, ancak çoğu durumda farklı dokular halinde organize edilmemiştir. [33] Süngerler tipik olarak gözeneklerden su çekerek beslenirler. [34] Bazıları süngerlerin çok ilkel olmadığını, bunun yerine ikincil olarak basitleştirilebileceğini düşünüyor. [35] Deniz anemonları, mercanlar ve denizanası içeren Ctenophora ve Cnidaria, radyal olarak simetriktir ve hem ağız hem de anüs görevi gören tek açıklığa sahip sindirim odalarına sahiptir. [36] Her ikisinin de farklı dokuları vardır, ancak organlar halinde organize edilmemiştir. [37] Sadece iki ana germ tabakası vardır, ektoderm ve endoderm, aralarında sadece dağınık hücreler bulunur. Bu nedenle, bazen diploblastik olarak adlandırılırlar. [38]

Echinodermata radyal olarak simetriktir ve denizyıldızı (Asteroidea), deniz kestanesi (Echinoidea), kırılgan yıldızlar (Ophiuroidea), deniz hıyarları (Holothuroidea) ve tüylü yıldızlar (Crinoidea) dahil olmak üzere yalnızca denizeldir. [39]

En büyük hayvan filumu da omurgasızlara dahildir: Böcekler, örümcekler, yengeçler ve onların akrabaları dahil Arthropoda. Tüm bu organizmalar, tipik olarak eşleştirilmiş uzantılarla tekrarlanan bölümlere ayrılmış bir gövdeye sahiptir. Ek olarak, büyüme sırasında periyodik olarak dökülen sertleştirilmiş bir dış iskelete sahiptirler. [40] İki küçük filum, Onychophora ve Tardigrada, eklembacaklıların yakın akrabalarıdır ve bu özellikleri paylaşırlar. Nematoda veya yuvarlak solucanlar, belki de ikinci en büyük hayvan filumudur ve aynı zamanda omurgasızlardır. Yuvarlak solucanlar tipik olarak mikroskobiktir ve suyun olduğu hemen hemen her ortamda bulunur. [41] Bir sayı önemli parazitlerdir. [42] Onlarla ilgili daha küçük filumlar Kinorhyncha, Priapulida ve Loricifera'dır. Bu grupların psödocoelom adı verilen indirgenmiş bir sölomları vardır. Diğer omurgasızlar arasında Nemertea veya şerit solucanlar ve Sipuncula bulunur.

Başka bir filum, yassı solucanlar olan Platyhelminthes'dir. [43] Bunlar başlangıçta ilkel olarak kabul edildi, ancak şimdi daha karmaşık atalardan geliştikleri anlaşılıyor. [44] Yassı solucanlar, en yakın akrabaları olan mikroskobik Gastrotricha gibi vücut boşluğu olmayan acoelomatlardır. [45] Rotifera veya rotiferler, sulu ortamlarda yaygındır. Omurgasızlar ayrıca Acanthocephala veya dikenli solucanlar, Gnathostomulida, Micrognathozoa ve Cycliophora'yı içerir. [46]

Ayrıca, en başarılı hayvan filumlarından ikisi olan Mollusca ve Annelida da dahildir. [47] [48] Tanımlanan türlerin sayısına göre ikinci en büyük hayvan filumu olan birincisi, salyangoz, istiridye ve kalamar gibi hayvanları içerir ve ikincisi, solucan ve sülük gibi parçalı solucanları içerir. Bu iki grup, trokofor larvalarının ortak varlığı nedeniyle uzun süredir yakın akraba olarak kabul edildi, ancak annelidler, her ikisi de segmentli oldukları için eklembacaklılara daha yakın kabul edildi. [49] Şimdi, bu, iki filum arasındaki birçok morfolojik ve genetik farklılık nedeniyle, genellikle yakınsak evrim olarak kabul edilir. [50]

Omurgasızların daha küçük filumları arasında Hemichordata veya meşe palamudu solucanları [51] ve Chaetognatha veya ok solucanları bulunur. Diğer filumlar arasında Acoelomorpha, Brachiopoda, Bryozoa, Entoprocta, Phoronida ve Xenoturbellida bulunur.

Omurgasızlar, bazıları taksonomik olarak eskimiş veya tartışmalı olan, ancak yine de kolaylık açısından kullanılan birkaç ana kategoride sınıflandırılabilir. Ancak her biri aşağıdaki bağlantılarda kendi makalesinde görünür. [52]

Makroomurgasızlar

    (porifera) (Ktenofora) (Cnidaria) (derisidikenli) (Platyhelminthes) (Annelida) (eklembacaklılar) (yumuşakça)

Mikroskobik omurgasızlar

En erken hayvan fosillerinin omurgasızlara ait olduğu görülmektedir. Güney Avustralya, West Central Flinders, Trezona Bore'deki Trezona Formasyonu'ndaki 665 milyon yıllık fosiller, erken süngerler olarak yorumlandı. [53] Bazı paleontologlar, hayvanların çok daha erken, muhtemelen 1 milyar yıl kadar erken ortaya çıktığını öne sürüyorlar. [54] Tonian döneminde bulunan izler ve yuvalar gibi iz fosilleri, metazoanlar gibi, kabaca solucanlar kadar büyük (yaklaşık 5 mm genişliğinde) ve karmaşık olan triploblastik solucanların varlığına işaret eder. [55]

453 MYA civarında, hayvanlar çeşitlenmeye başladı ve önemli omurgasız gruplarının çoğu birbirinden ayrıldı. Omurgasız fosilleri, Fanerozoyik'ten gelen çeşitli tortu türlerinde bulunur. [56] Omurgasızların fosilleri, stratigrafide yaygın olarak kullanılmaktadır. [57]

Sınıflandırma

Carl Linnaeus, bu hayvanları Insecta ve artık modası geçmiş Vermes (solucanlar) olmak üzere sadece iki gruba ayırdı. 1793'te Muséum National d'Histoire Naturelle'de "Insecta ve Vermes Küratörü" pozisyonuna atanan Jean-Baptiste Lamarck, hem bu tür hayvanları tanımlamak için "omurgasız" terimini icat etmiş hem de orijinal iki grubu on gruba ayırmıştır. Linnean Insecta'dan Arachnida ve Crustacea'yı ve Linnean Vermes'ten Mollusca, Annelida, Cirripedia, Radiata, Coelenterata ve Infusoria'yı ayırarak. Artık deniz süngerleri ve yassı solucanlar gibi basit organizmalardan eklembacaklılar ve yumuşakçalar gibi karmaşık hayvanlara kadar 30'dan fazla filumda sınıflandırılıyorlar.

Grubun önemi

omurgasızlar hayvandır olmadan bir vertebral kolon. Bu, şu sonuca yol açmıştır: içindeomurgalılar, normal omurgalılardan sapan bir gruptur. Bunun nedeni, geçmişte Lamarck gibi araştırmacıların omurgalıları bir "standart" olarak görmeleridir: Lamarck'ın evrim teorisinde, Lamarck, evrimsel süreçle kazanılan özelliklerin sadece hayatta kalmayı değil, aynı zamanda bir "yaşama" doğru ilerlemeyi de içerdiğine inanıyordu. insanların ve omurgalıların omurgasızlardan daha yakın olduğu daha yüksek form". Although goal-directed evolution has been abandoned, the distinction of invertebrates and vertebrates persists to this day, even though the grouping has been noted to be "hardly natural or even very sharp." Another reason cited for this continued distinction is that Lamarck created a precedent through his classifications which is now difficult to escape from. It is also possible that some humans believe that, they themselves being vertebrates, the group deserves more attention than invertebrates. [58] In any event, in the 1968 edition of Omurgasız Zoolojisi, it is noted that "division of the Animal Kingdom into vertebrates and invertebrates is artificial and reflects human bias in favor of man's own relatives." The book also points out that the group lumps a vast number of species together, so that no one characteristic describes all invertebrates. In addition, some species included are only remotely related to one another, with some more related to vertebrates than other invertebrates (see Paraphyly). [59]

For many centuries, invertebrates were neglected by biologists, in favor of big vertebrates and "useful" or charismatic species. [60] Invertebrate biology was not a major field of study until the work of Linnaeus and Lamarck in the 18th century. [60] During the 20th century, invertebrate zoology became one of the major fields of natural sciences, with prominent discoveries in the fields of medicine, genetics, palaeontology, and ecology. [60] The study of invertebrates has also benefited law enforcement, as arthropods, and especially insects, were discovered to be a source of information for forensic investigators. [40]

Two of the most commonly studied model organisms nowadays are invertebrates: the fruit fly Drosophila melanogaster ve nematod Caenorhabditis elegans. They have long been the most intensively studied model organisms, and were among the first life-forms to be genetically sequenced. This was facilitated by the severely reduced state of their genomes, but many genes, introns, and linkages have been lost. Analysis of the starlet sea anemone genome has emphasised the importance of sponges, placozoans, and choanoflagellates, also being sequenced, in explaining the arrival of 1500 ancestral genes unique to animals. [61] Invertebrates are also used by scientists in the field of aquatic biomonitoring to evaluate the effects of water pollution and climate change. [62]


İlginizi çeken haberlerimiz, kurslarımız veya etkinliklerimiz olduğunda haberdar olun.

E-postanızı girerek Penn State Extension'dan iletişim almayı kabul etmiş olursunuz. Gizlilik politikamızı görüntüleyin.

Gönderiniz için teşekkür ederiz!

Spotted Wing Drosophila Part 1: Overview and Identification

Nesne

Tree Fruit Production Guide

Kılavuzlar ve Yayınlar

Plum Pox Virus and Other Diseases of Stone Fruits

Kılavuzlar ve Yayınlar

Spotted Lanternfly Identification and Concern

Videolar

Spotted Lanternfly Permit Training for Businesses: Pennsylvania

Çevrimiçi kurslar

Yönetmek

Insect Borer Management Practices insect borer management practices involve several tactics and strategies that are used collectively as an integrated approach to pest management (IPM). Insect borer IPM practices are multifold and involve several techniques that may be used depending on the type of borer pest and the host plant. Although these management practices can be effective when used alone, collectively they are much more efficient in combating many borer species.

Monitoring. The first step in managing any pest species begins with a proper monitoring program. Efficient monitoring tools are essential for accurate and cost effective management programs. A number of methods have been developed to monitor woodboring pest species. Common monitoring tools include sticky traps, funnel traps, pyramid traps, and circle traps. Traps capture borers by exploiting their behavioral and physiological responses to color, trap placement and design, and pheromones. Pheromone lures are often the best method for attracting woodborer species because they are species and sex specific. However, research involving these lures has been restricted to only a few major woodboring pest species.

Mechanical Control. Removing and destroying infested, dying, or dead plants and plant parts can often be the best defense for current and future infestations. If infestation numbers are low, direct removal of larvae from trees using a knife or metal hook can be a potential option for control.

Chemical Control. Chemical control is the most common preventative measure for insect borer infestations. However, very few effective pesticides have been registered for use against woodborers, and many of the older chemicals have been discontinued. Often only newly transplanted trees and shrubs or high value ornamental and landscape trees justify the cost of using chemical management. Most insecticides registered for woodborer control are residual insecticides, which are applied as sprays to trunks and branches of host trees. These insecticides work by killing adult and early larval stages that tunnel through the treated bark layer. Another chemical control method is trunk injection, which delivers insecticide into the cambium and phloem tissues where insect borers feed. However, research has shown that the damage caused by inserting the injection devices into trunks can significantly harm the host tree, and in some cases have even attracted pest species to the treated area.

Biological Control. Biological control is currently a little-used management practice for insect borers. Natural enemies have often been overlooked as a suitable control method because very little is known about these organisms in relation to insect borers. In addition, borer damage tends to occur before most natural enemies can effectively suppress these pests. However, entomopathogenic nematodes have been used with some success. Continuing research involving these organisms has shown promise for future borer management.

Önleme. Borer populations are often limited by environmental conditions and food (i.e., host plants in the proper condition). Environmental factors that cause periodic outbreaks, such as adverse weather conditions, are often uncontrollable. However, recognizing tree, stand, and landscape factors that predispose a plant to woodborer infestations is the first step in a prevention program.

The vast majority of woodboring insects are considered secondary invaders. Good horticultural and/or silvicultural practices that keep trees healthy are often the best defense against these pests. Appropriate care of trees and shrubs can discourage many borer pests, and can even help infested plants survive. Any activity that can reduce tree stress can potentially be an effective measure for control. These activities can include: avoiding injury to trunks and branches, proper site selection of host plants, selection of well-adapted host species to a given area, proper watering and fertilization regimes, and proper care of injured plants. Other activities such as trunk wrapping to prevent mechanical injury have shown mixed results, and in some cases have actually promoted infestation. For instance, damage from outbreaks of southern pine beetle, a severe pest of conifers in the southeast, can be minimized if proper silvicultural practices are conducted. Research and experience have shown that pine forests that are either overcrowded, overmature, or located on poorly drained bottomland soils are more likely to suffer from southern pine beetle infestations.


İlginizi çeken haberlerimiz, kurslarımız veya etkinliklerimiz olduğunda haberdar olun.

E-postanızı girerek Penn State Extension'dan iletişim almayı kabul etmiş olursunuz. Gizlilik politikamızı görüntüleyin.

Gönderiniz için teşekkür ederiz!

Producción de Ajo

Nesne

Beekeeping Basics

Kılavuzlar ve Yayınlar

A Field Guide to Honey Bees and Their Maladies

Kılavuzlar ve Yayınlar

Mid-Atlantic Commercial Vegetable Production Recommendations

Kılavuzlar ve Yayınlar

Potato Grower Interview

Videolar

İlginizi çeken haberlerimiz, kurslarımız veya etkinliklerimiz olduğunda haberdar olun.

E-postanızı girerek Penn State Extension'dan iletişim almayı kabul etmiş olursunuz. Gizlilik politikamızı görüntüleyin.

Gönderiniz için teşekkür ederiz!

What is a Coggins Test?

Nesne

Proper Animal Mortality Disposal

Videolar

Controlling Parasite Resistance on Your Equine Farm

Çevrimiçi kurslar

Agroterrorism: A Threat to US Animal Agriculture

Nesne

When to Blanket a Horse

Nesne

What is active host transmission?

Insects under the explicit control of parasitic fungi (entomopathogens) are sometimes characterized by colorful terms, even colloquially categorized as “zombies” [2,3], a moniker that draws comparison to both fictitious and factual elements of contemporary life. Though the effects of entomopathogenic fungi on their hosts are a far cry from behavior-modifying viruses such as rabies or the phantasmic world of brain-eating zombies that drag their way through our popular culture, both rabies and select entomopathogenic fungi are nevertheless archetypal examples of pathogens that actively enlist their living hosts for successful transmission, a phenomenon referred to hereafter as active host transmission (AHT) [4].

Victims of the rabies virus experience hydrophobia, refuse to swallow (allowing the virus to collect around their mouths), and are much more likely to aggressively bite and interact with others [5]. This unsettling rewiring of animal behavior supplants the interests of the victim in favor of the interests of the virus within. The phenomenon of parasite-induced AHT in animal hosts has evolved numerous times across a variety of taxonomic groups. Örneğin, Toksoplazma gondi, a protist parasite, suppresses the fear response of rodents and drives them to seek out feline foes to help complete the lifecycle of their protist partner [6]. Horsehair worms (Nematomorpha) encourage their host crickets to drown themselves, which allows these parasites to complete their own lifecycle in water [7]. Likewise, certain entomopathogenic fungi such as Massospora spp. manipulate their hosts’ sexual behaviors to increase their odds of transmission [8]. Such engagements appear to serve the interests of the fungal pathogen over the interests of their hosts.

Manipulation of a host to focus on pathogen transmission is fascinating because it raises questions about the nature of autonomy and shines a light on the physical and behavioral manifestations of parasitism. AHT is a form of biological puppetry in which the pathogen manipulates the behavior of its powerless host. But, identifying clear behavioral manipulations and distinguishing AHT from other notable entomopathogen-induced behaviors such as summit disease, particularly when the infected insects are moribund or dead at the time of their discovery, is a challenge. In anamorphic fungi, including Metarhizium species [9], spores are dispersed on contact or passively through the environment. In summit diseases such as Entomopthora muscae [3] or Ophiocordyceps species [2], dissemination of spores is facilitated by the positioning of the host cadaver. In both of these modes of transmission, spores develop on the mummified host after death, and the deceased host does not actively disperse spores. In contrast, AHT requires 1) a living host and 2) host behavior that facilitates pathogen transmission, thereby increasing pathogen fitness at the expense of host fitness (Fig 1). To achieve these ends, AHT pathogens must produce transmissible reproductive structures while still allowing the host some level of functionality, which is a major distinction between AHT and most other entomopathogenic fungi, in which infectious spores (conidia) are not produced until after host death. Inconspicuous infectious stages also present a challenge for the pathogen itself: developing complex reproductive structures while still inside the living host could result in physical disruption from insect organs, muscles, and exoskeleton that would be static on an insect cadaver. Even when infections are conspicuous, such as when the abdomens of Massospora-infected cicadas swell and are eventually shed (Fig 2), the remaining internal organs must retain some functionality to keep the cicada alive. AHT parasites also modify host behaviors so that parasite reproductive structures appear when hosts are manipulated to increase their interactions with uninfected potential hosts. This synchronization could either exploit natural host behaviors or induce behaviors that increase the frequency of interaction between host insects.


The insect nutrition data

NOTE: One or both of the tables below are sortable by column heading, if your browser supports it.

Feeder Insect Macro Nutrition Data
Böcek Cal:P Water% Dry Matter% Chitin% Protein%
(dmb)
Fat%
(dmb)
Minerals%
(dmb)
Dubia Roach
(Blaptica dubia)
0.66 :1 59.80 40.20 3.50 21.81
(54.25)
7.70
(19.15)
1.70
(3.91)
Banded Cricket
(Gryllus assimilis)
0.13 :1 73.30 26.70 9.60 15.20
(56.92)
5.20
(19.47)
1.06
(3.96)
Mealworm
(tenebrio tacizcisi)
0.14 :1 62.90 37.10 5.95 18.22
(49.1)
13.06
(35.2)
1.60
(4.30)
Superworm
(Zophobas morio)
0.05 :1 68.76 31.24 3.62 22.28
(71.32)
17.00
(54.42)
0.34
(1.10)
Waxworm
(Achroia grisella)
0.10 :1 58.00 42.00 13.44 14.28
(34.00)
24.78
(59.00)
0.53
(1.27)
İpekböceği
(Bombyx mori)
0.77 :1 76.60 23.40 11.20 13.10
(56.00)
8.38
(35.80)
0.60
(2.57)
Giant Mealworm
(tenebrio tacizcisi)
0.07 :1 61.00 39.00 5.30 18.40
(47.18)
16.77
(43.00)
1.90
(4.88)
Black Soldier Fly Larvae
(Hermetia illucens)
2.6 :1 61.20 68.80 4.76 17.50
(45.10)
21.72
(55.98)
1.36
(3.50)
Meyve sineği
(Bombyliidae)
0.10 :1 67.10 32.90 5.33 18.52
(56.30)
5.89
(17.90)
1.71
(5.20)
Housefly
(musca domestika)
0.20 :1 74.80 25.20 7.56 19.70
(78.17)
1.90
(7.54)
0.43
(1.70)
Tobacco Hornworm
(Manduca seksta)
n/a 85.00 15.00 n/a 8.43
(56.20)
3.13
(20.87)
n/a
(n/a)
Butterworm
(Chilecomadia moorei)
0.07 :1 62.40 37.60 3.90 14.90
(39.63)
6.77
(18.00)
0.49
(1.30)
Superworm Beetle
(Zophobas morio)
0.08 :1 59.90 40.10 7.26 20.70
(51.62)
16.04
(39.90)
0.64
(1.60)
Mealworm Beetle
(tenebrio tacizcisi)
0.08 :1 64.50 35.50 5.72 20.60
(58.03)
3.02
(8.50)
0.75
(2.11)
Çekirge
(Caelifera)
0.18 :1 68.30 31.70 8.73 19.74
(47.00)
3.30
(10.41)
0.78
(2.45)
Solucan
(Lumbricus terresstris)
1.58 :1 75.80 24.20 5.06 12.25
(50.60)
2.57
(10.60)
0.70
(2.90)
Turkestan Cockroach
(Blatta lateralis)
0.22 :1 69.10 30.90 6.80 19.00
(61.49)
9.89
(32.00)
0.37
(1.20)
American Cockroach
(Periplaneta americana)
0.40 :1 61.30 38.70 3.64 20.86
(53.90)
10.99
(28.40)
1.28
(3.30)
Domestic Cricket
(Acheta domestica)
0.14 :1 73.20 26.80 8.12 17.26
(64.40)
6.11
(22.80)
0.42
(1.55)
Locust
(Schistocerca americana)
0.13 :1 62.1 37.9 20.80 22.59
(59.60)
8.03
(21.2)
2.12
(5.60)
Feeder Insect Micronutrients
Böcek Kalsiyum
(mg/kg)
Phos.
(mg/kg)
Mag.
(mg/kg)
Vitamin A
(IU/kg)
B-carotene
(mcg/kg)
Dubia Roach
(Blaptica dubia)
560 840 1300 <1000 51
Banded Cricket
(Gryllus assimilis)
345 4313 272 x x
Mealworm
(tenebrio tacizcisi)
139 2100 606 16 4
Superworm
(Zophobas morio)
251 2356 445 <1000 10
Waxworm
(Achroia grisella)
190 1900 295 <1000 110
İpekböceği
(Bombyx mori)
170 228 498 x x
Giant Mealworm
(tenebrio tacizcisi)
184 2720 1864 <1000 x
Black Soldier Fly Larvae
(Hermetia illucens)
9256 3560 1620 205 112
Meyve sineği
(Bombyliidae)
32 410 262 9
Housefly
(musca domestika)
194 951 698 140 55
Tobacco Hornworm
(Manduca seksta)
x x x x x
Butterworm
(Chilecomadia moorei)
129 1871 250 x 512
Superworm Beetle
(Zophobas morio)
x x x 26
Mealworm Beetle
(tenebrio tacizcisi)
25 273 x x x
Çekirge
(Caelifera)
274 1300 x x x
Solucan
(Lumbricus terresstris)
444 1590 136 x x
Turkestan Cockroach
(Blatta lateralis)
385 1760 265 50 181
American Cockroach
(Periplaneta americana)
77 194 600 x x
Domestic Cricket
(Acheta domestica)
341 1870 212 <1000 2720
Locust
(Schistocerca americana)
95 731 x x x

Çözüm

Entomophagy is the key to solving the growing needs of nutrients globally because edible insects can provide high amounts of proteins, fats, vitamins and mineral elements with great economic and environmental advantages. Insects can serve in various areas in addition to being eaten as cuisines and snacks. Various modern products have been developed due to the intensive studies of insects. The consumption of edible insects is increasingly popular. People are consuming insects not only for nutrition, but also for fun. However, it is still concerned that the utilization of edible insects might bring health and safety issues.

The market of edible insects is not synchronous to the benefits they can bring at this stage. Strategies of promotion and production are proposed to attract and reassure the customers. Semi-cultivation is suggested as it can effectively boost the production of certain insects. Both farming and processing should be standardized to ensure the quality of insect products. Communications between farms and industries are advocated for efficient cooperation and further profits. Agricultural industrial integration is expected by the development of new insect products, the improvement of cultivation and the optimization of production.