Bilgi

Elektroporatör neden bir küvete ihtiyaç duyar?

Elektroporatör neden bir küvete ihtiyaç duyar?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Ev laboratuvarım için hiçbir zaman bir Elektroporatör almadım. Çok pahalı olduğu için kendim için ucuz bir diy versiyonu oluşturmaya çalışıyorum. Tüm ticari tasarımlarda, elektroporasyon yapmak için numuneyi 0.1cm-0.2cm'lik bir küvete koymamız gerektiğini görüyorum, sadece bir eppendorf plastik tüp ile değiştirip 0.1->0.2cm alüminyum elektrotumu içine koyabilir miyim?


Genelde evde demlenen bir elektroporatör yapmamanızı tavsiye ederim: Elektroporasyon için gereken voltaj o kadar yüksektir ki, profesyonel ekipmanla bile kolayca ark yıldırımı elde edebilirsiniz. Ciddi bir yangın tehlikesi oluşturacak kendi kendine yapılmış bir cihazda.

Ancak teorik olarak bile önerdiğiniz tasarımla ilgili sorunlar var:

1) Küvetteki TÜM bakteri hücrelerinin, yüksek voltaj sıçramasının neden olduğu elektrik alanına maruz kalması önemlidir. Basit elektrotlar kullanırsanız, yalnızca aralarındaki birkaç hücreyi doğrudan etkilersiniz, bu da elektroporasyonun verimini büyük ölçüde azaltır. Tasarımınızın düzgün çalışması için elektrotlara ihtiyacınız olacaktır. kesinlikle tüm bakterilerin aralarına sıkışmasını sağlamak için bir eppendorf tüpünün boyutlarıyla eşleştirin.

2) Cihazınızla sadece bir elektroporasyon yapabilirsiniz, ardından elektrotları iyice temizlemeniz gerekir. Bu iki nedenden dolayı yapılmalıdır: ilk olarak, bir gruptan diğerine herhangi bir bakteri (veya Chris'in işaret ettiği gibi DNA) taşınmasını istemezsiniz. İkinci olarak elektrotlar, aralarında ark yıldırımını önlemek için herhangi bir tuzdan (veya bir çözeltide iletimi artıran diğer moleküllerden) temizlenmelidir.


ElectroPen: Ultra düşük maliyetli, elektriksiz, taşınabilir bir elektroporatör

Bağlı Kuruluşlar Kimya ve Biyomoleküler Mühendisliği Okulu, Georgia Teknoloji Enstitüsü, Atlanta, Georgia, Amerika Birleşik Devletleri, Lambert Lisesi, Suwanee, Georgia, Amerika Birleşik Devletleri

Afiliation School of Chemical and Biomolecular Engineering, Georgia Institute of Technology, Atlanta, Georgia, Amerika Birleşik Devletleri

Afiliation School of Chemical and Biomolecular Engineering, Georgia Institute of Technology, Atlanta, Georgia, Amerika Birleşik Devletleri

Afiliation School of Chemical and Biomolecular Engineering, Georgia Institute of Technology, Atlanta, Georgia, Amerika Birleşik Devletleri

Üyelik Lambert Lisesi, Suwanee, Georgia, Amerika Birleşik Devletleri

Afiliation School of Chemical and Biomolecular Engineering, Georgia Institute of Technology, Atlanta, Georgia, Amerika Birleşik Devletleri


ÖZET

Spesifik moleküllerin etiketlenmesi ve canlı hücrelerdeki yapay kontrolleri, hücre içi moleküler dinamikleri araştırmak için güçlü tekniklerdir. Bu teknikleri kullanmak için moleküler bileşiklerin (bundan sonra basitçe "örnekler" olarak tanımlanacaktır) hücrelere yüklenmesi gerekir. Elektroporasyon teknikleri, membran geçirimsiz numuneleri hücrelere yüklemek için kullanılır. Burada dört özel özelliğe sahip yeni bir elektroporatör geliştirdik. (1) Elektrik darbeleri, yapışkan hücrelere, onları alt tabakadan çıkarmadan doğrudan uygulanır. (2) Numuneler, ters çevrilmiş bir mikroskop sahnesinde gözlemlenirken yapışık hücrelere yüklenebilir. (3) Sadece 2 µl numune solüsyonu yeterlidir. (4) Piyasada bulunan bir otomatik pipetin ucuna bağlı olan küvet elle manipüle edildiğinden cihazın kullanımı çok kolaydır. Cihazımızı kullanarak, göç eden keratositlere aktin filamentlerinden oluşan bir flüoresan prob olan Alexa Fluor 546 phalloidin yükledik. Bu probun hücrelerdeki seviyesi, elektroporasyon ortamındaki konsantrasyonu değiştirilerek kolaylıkla ayarlanabilir. Örnekler keratositlere, nötrofil benzeri HL-60 hücrelerine yüklenebilir ve diktostelyum bir lamel üzerinde hücreler ve elastik bir silikon substrat üzerinde keratositler. Yeni cihaz, çok çeşitli yapışık hücreler için faydalı olmalı ve çeşitli substrat türlerindeki hücreler için elektroporasyona izin vermelidir.


Elektroporasyon küvetleri-sadece tek kullanımlık mı? - (23 Eylül 2006 )

Selam,
elektroporasyon küvetleri gerçekten sadece bir kez kullanılabilir mi?
yani aynı DNA ile aynı bakteri hattının transformasyonu için tekrar tekrar kullanabilir miyim?

Tek kullanımlık diyorlar ama aynı DNA ve aynı bakteri hattı ise cüz tekrar kullanılabilir diye düşünüyorum.
elektroporatörü göstermeye gelen pazarlama sorumlusu, aynı DNA ve bakteri hattını yapıyorsa, aynı küvetin aynı gün elektroporasyon için tekrar kullanılabileceğini söyledi.
iyi şanslar. dene ve c

aslında bu tek kullanımlık eletroporasyon küvetleri tekrar ve tekrar tekrar kullanılabilir.

Yanlış kullanım ve kaba kullanımdan çatlayana kadar.

Bir küvet kullanıldıktan sonra, onu seyreltik Trigen (iyonik olmayan deterjan) içeren bir behere atmanız yeterlidir.

Beher dolduğunda, küvetleri akan musluk suyu altında en az 5 kez, ardından en az 4 kez damıtılmış su ile iyice durulayın. 15 dakika çok sıcak distile suda bekletin (isteğe bağlı). Daha sonra 20 dakika boyunca %70 EtOH ile kuvvetlice çalkalayın (sallama yapmak için bir çalkalayıcı kullanıyoruz). Çözeltiyi taze %70 EtOH ile değiştirin, biraz daha çalkalayın (20 dakika). Bunu son bir üçüncü döngü için yapın. Daha sonra EtOH'yi boşaltın, örtün ve EtOH'nin buharlaşması için birkaç gün bankta bırakın.

Küvetleri çatlayana kadar kullanırdık.

Onları yıkayıp küvetleri %70 etanollü behere atardık. Daha sonra birkaç kez kuvvetlice suyla yıkar, son olarak damıtılmış suda yıkar ve tekrar kuruturuz.

Küvetleri ayrıca UV ışığına (yaklaşık 5 dakika) maruz bırakmamız dışında, laboratuvarımızda yukarıda belirtilenlerle hemen hemen aynısını yapıyoruz.

tamam burada gerçekten basit, sadece üç kez etanol ile yıkarlar ve doğrudan tekrar kullanırlar. Buradaki herkes harika sonuçlar aldığına inandığından, sürekli kontaminasyon bildiriyorum. Küvetlerden mi merak ediyorum, ancak laboratuvarda uzun yıllar boyunca sürekli olarak yeniden kullanılan sadece 5 küvetimiz var, bu yüzden iki kez kontrol etmek için yenilerini deneyemiyorum, siparişi vermek kesinlikle söz konusu değil. neyse, başkalarının da kontaminasyona sahip olduğundan şüphelenmeye başladım ama rapor etmiyorum ..

Kirlenme.. ah canım. Küvetlerin yeniden kullanılmasıyla olur ancak genellikle çok küçüktür.

Küvetler, alışveriş yapacaksanız oldukça ucuz olabilir. Japonya'da ne kadara mal olduklarından emin değilim, ancak İngiltere'de fiyat küvet başına 11 GBP'den 1 GBP'ye kadar değişebilir. Küvetlerin hepsi tamamen aynı görünüyor, aynı şekilde çalışıyor. Hatta aynı renk kodlamasına sahipler. Bence aynı ürün, insanları yakalamak ve kuru kana bulamak için farklı fiyatlandırılıyor.

Bu yüzden belki de alışveriş yapmak bir fikir olabilir. Daha küçük şirketler (en azından burada), fiyatları konusunda biraz daha az kana susamış ve hizmetlerinde daha dostça/hızlı olma eğilimindedir.

Parçası 1-2 Euro'ya alırdık. Denemek için sadece birkaç parça almayı deneyebilirsiniz.

Elektroporasyon küvetlerini her zaman yeniden kullandım ve tekrar kullandım. yıkama olarak miliq su ve %70 etanol yeterlidir. Genelde önce suyla, sonra etanolle, sonra tekrar suyla fışkırtırım, kuruturum ve bir sonraki tur için saklarım.

viv'i seviyorum ve her iki ayda bir, tüm küvetleri 1 saat ila gece boyunca 0,5N NaOH banyosuna koyuyorum ve ardından suyla yıkıyorum.
Şimdiye kadar kirlilik yok.
Aynı küvette iki kez elektrik arkı oluştuğunda onları atıyorum.


Altbilgi

Bilgi

Başka

Bir Fortune 500 şirketi olan Avantor ®, biyofarma, sağlık, eğitim ve kamu, ileri teknolojiler ve uygulamalı malzeme sektörlerindeki müşterilere görev açısından kritik ürün ve hizmetlerin önde gelen küresel sağlayıcısıdır. Portföyümüz, hizmet verdiğimiz sektörlerdeki en önemli araştırma, geliştirme ve üretim faaliyetlerinin neredeyse her aşamasında kullanılmaktadır. En güçlü yönlerimizden biri, müşterilerimizin ihtiyaçlarını desteklemek için stratejik olarak konumlandırılmış küresel bir altyapıya sahip olmaktan geliyor. Küresel ayak izimiz, 225.000'den fazla müşteri lokasyonuna hizmet vermemizi sağlıyor ve 180'den fazla ülkedeki araştırma laboratuvarlarına ve bilim adamlarına kapsamlı erişim sağlıyor. Daha iyi bir dünya yaratmak için bilimi harekete geçiriyoruz. Bilgi için www.avantorsciences.com adresini ziyaret edin ve bizi LinkedIn, Twitter ve Facebook'ta bulun.

& 2021 VWR International, LLC'yi kopyalayın. Her hakkı saklıdır.
&kopyala 2021 FORTUNE Media IP Limited Tüm hakları saklıdır. Lisans altında kullanılır.

Internet Explorer sürümünüz bu web sitesi tarafından desteklenmiyor. Internet Explorer 11'e veya desteklenen başka bir tarayıcıya yükseltmenizi ve IE11 kullanıp kullanmadığınızı kontrol etmenizi öneririz. Uyumluluk Görünümü Modu.


Süreç

Elektroporasyon yapılır elektroporatörler, elektrik akımını yaratan ve hücre solüsyonu yoluyla gönderen cihazlar (tipik olarak bakteri, ancak bazen yukarıda tartışıldığı gibi diğer hücre türleri kullanılır). Çözelti, kenarlarında iki alüminyum elektrot bulunan bir cam veya plastik küvete pipetlenir.

Örneğin, bakteriyel elektroporasyon için genellikle yaklaşık 50 mikrolitrelik bir süspansiyon kullanılır. Elektroporasyondan önce dönüştürülecek plazmit ile karıştırılır. Karışım küvete pipetlenir, elektroporatörde voltaj ayarlanır (genellikle 240 volt kullanılır) ve küvet elektroporatöre yerleştirilir. Elektroporasyondan hemen sonra bakterilere (küvette veya bir eppendorf tüpünde) 1 mililitre sıvı ortam eklenir ve tüp bakterinin optimal sıcaklığında bir saat veya daha fazla inkübe edilir ve ardından bir agar plakasına yayılır.

Elekroporasyonun başarısı büyük ölçüde plazmit çözeltisinin saflığına, özellikle de tuz içeriğine bağlıdır. Saf olmayan çözümler küçük bir patlamaya (ark olarak bilinir) neden olabilir, bu durumda bakteriler ölür ve işlemin yeniden yapılması gerekir. Bu sık sık meydana gelirse, elektroporasyondan önce ek bir çökeltme gerçekleştirilebilir.


Elektroporatör neden bir küvete ihtiyaç duyar? - Biyoloji

Kullandığım küvetin boşluk genişliği 0,4 cm. Bu küveti maya ve bakteri hücreleri için kullanabilir miyim?

Bu küveti bio-rad micropulser elektroporatör ile kullanmanın protokolünü bana verebilecek olan var mı?

0,4 cm boşluk genişliğinde küvetler, bio-rad tavsiyesine göre memeli hücreleri veya ES hücresi elektroporasyonu için kullanılır.

sende işe yaradı mı

0,4 cm boşluklu küvet E. coli ile çalışır.

Merhaba Winschau, E. Coli için 0,4 cm küvet kullanıldığında dönüşüm verimliliğiyle ilgileniyorum. Teşekkürler! Ben de denemek istiyorum.

Protein modelleme/biyoinformatik/yapısal biyoloji için ISI-düşük etki faktörü yayınlamak için hangi dergi uygundur?

Düşük etki faktörlü protein modelleme ile ilgili ISI, scopus indeksli makale yayınlamak istiyorum.

Bu DOPE profilini nasıl tahmin edebilir ve değerlendirebilirim?

Bu DOPE profili için yorum yapabilecek olan var mı? Teşekkürler.

Bu makale nasıl indirilir? Teşekkürler.

Biyosentezden fonksiyona çiçek uçucuları

Merhaba, 300 ila 450 amino asit kalıntısı arasında değişen amino asit dizilerinin boyutu için uygun modelleme sunucusu nedir?

Protein biyoinformatik araçlarını kullanmak için acemi bir kullanıcıyım. 3 boyutlu yapıyı modellemek için ilgilendiğim amino asit dizilerini analiz etmenin net yolunu bilmiyorum. İlk adım nedir.

Protein dizilerini göndermek için TSP-PRED nasıl düzgün bir şekilde kullanılabilir?
Geno3D nasıl açılır?
.ali dosyasına ve .py dosyasına nasıl değiştirilir?

Modelleyici 9.14 (Mod9.14) için mevcut dosyalarım, pdb formatındaki protein dizileri dışında hepsi not defterindeydi. Dosyalarımı .ali ve .py formatına nasıl değiştireceğimi bilmiyorum. Herhangi bir öneri?

Birisi 500 mM imidazol içeren elüsyon tamponunda saflaştırılmış his-etiket proteini hakkında tavsiyede bulunabilir mi (His Spin Trap kiti - GE Healthcare)?

500 mM imidazol içeren 200 ul elüsyon tamponu içinde saflaştırılmış his-etiket proteinini ayrıştırdım. Ardından, jel üzerinde spesifik his etiketi protein bandının varlığını doğrulamak için SDS-PAGE için kullanmak istiyorum. Ne.

Göğüste ağrılı yanma hissi. Kanserin erken uyarı işareti mi?

H2 bloker, proton pompa inhibitörleri ve diğer antasitlerin kullanımının tekrarlayan mide ekşimesinin ilerlemesine yol açabileceği doğru mu? Mide asidini azaltmanın etkisi de gastrin olmasını sağlayabilir.

Ayırıcı jel katılaşmaz. Nasıl sorun giderilir?

Kapalı döküm çerçeve içinde 1.0 mm Entegre ara parçalı ayırıcı plakalar arasında TEMED uygulanmış ayırıcı jel karışımının üzerine herhangi bir sıvı koymak gerekir mi? Varsa ne tür sıvı.

Ölümcül hata

Sistemimde enerji minimizasyonu yapmaya çalıştığımda aşağıdaki gibi ölümcül bir hata aldım. Önemli hata: Atomtype opls_116 bulunamadı Bu satırı daha önce eklemiş olmama rağmen: topolojimdeki [molecultype] yönergesine "oplsaa.ff/spc.itp" dahil water #include.

Ölümcül hata

Sistemimde enerji minimizasyonu yapmaya çalıştığımda aşağıdaki gibi ölümcül bir hata aldım. Önemli hata: Atomtype opls_116 bulunamadı Bu satırı daha önce eklemiş olmama rağmen: topolojimdeki [molekül türü] yönergesine "oplsaa.ff/spc.itp" dahil water #include.

Ölümcül hata

Sistemimde enerji minimizasyonu yapmaya çalıştığımda aşağıdaki gibi ölümcül bir hata aldım. Önemli hata: Atomtype opls_116 bulunamadı Bu satırı daha önce eklemiş olmama rağmen: topolojimdeki [molecultype] yönergesine "oplsaa.ff/spc.itp" dahil water #include.

Ölümcül hata

Sistemimde enerji minimizasyonu yapmaya çalıştığımda aşağıdaki gibi ölümcül bir hata aldım. Önemli hata: Atomtype opls_116 bulunamadı Bu satırı daha önce eklemiş olmama rağmen: topolojimdeki [molekül türü] yönergesine "oplsaa.ff/spc.itp" dahil water #include.

Moleküler testleri de geçersiz kılmayan bir tuzak tuzağı için ne tür bir sıvı kullanabilirim?

Merhaba, karınca örnekleri elde etmek için tuzak testine başlamak istiyorum ama bu böcekler üzerinde moleküler analiz yapmam gerekiyor. Peki ne tür bir sıvı kullanabilirim? Etanolün süresi çok erken doluyor ve buna ihtiyacım var.


Bölüm I: Şekerlerde Gıda Boyalarının Belirlenmesi

Birçok gıda, ilaç ve kozmetik, federal olarak onaylanmış gıda boyaları (FD & amp C boyaları) ile yapay olarak renklendirilir. Bu boyalar Red 40, Red 3, Yellow 5, Yellow 6, Blue 1 ve Blue 2'yi içerir. Her boyanın tanımlanabilir bir absorpsiyon spektrumu ve piki olduğundan, kullanılan FD & C boya türlerini tanımlamak için bir spektrofotometre kullanılabilir. ürün.

Pigmentler, bu boyalardan bir veya daha fazlasını içeren yiyecek ve içeceklerden ekstrakte edilebilir. Bu ekstraktın absorpsiyon spektrumu, maksimum absorbans piklerini aşağıdaki tablodaki bilgilerle karşılaştırarak o yiyecek veya içecekte hangi boyaların olduğunu belirleyebilir. Bir gıda ekstraktının absorpsiyon spektrumunun 630 nm'de ve 428 nm'de bir tepe noktası varsa, gıdanın hem Mavi #1 hem de Sarı #5 içerdiğini varsayabilirsiniz. Aşağıdaki tablo, bu boyaların her biri için pik absorbans dalga boyunu vermektedir.

Tablo 1. Yaygın Olarak Kullanılan FD & C Boyalarının Maksimum Absorbans Dalga Boyu

Malzemeler

Prosedür

A. Şekerden Boya Çıkarma (Bunu sizin için Eğitmeniniz yapacak)

Test edilecek her renk için bir test tüpüne ve bir küvete ihtiyacınız olacak. Bir tüpe 4 mL su ölçün. Aynı renkteki 2-4 şekeri su ile birlikte bir test tüpüne koyun. Yavaşça döndürün ve bir dakika bekleyin. Ardından, bir mikrosantrifüj tüpüne yaklaşık 1 mL sıvı dökün. Mikrosantrifüj tüpünü maksimum hızda 60 saniye döndürün. Döndürmeden önce santrifüjün dengeli olduğundan emin olun. Berrak sıvıyı (süpernatant) bir küvete aktarın. Partikülleri (pellet) geride bıraktığınızdan emin olun.

Şekil 4. Absorbans Eğrisi


Kılcal ve tel tipi elektrot kullanan yeni bir elektroporasyon yöntemi

Elektroporasyon, gen transfeksiyonunu sağlamak için yaygın olarak kullanılır. Elektroporasyonda yaygın bir problem, diğer transfeksiyon yöntemlerinden daha düşük bir canlılığa sahip olmasıdır. Bu çalışmada, hücre hatları, birincil hücreler ve kök hücreler de dahil olmak üzere çok çeşitli memeli hücrelerinde etkili olan bir kılcal uç ve bir pipet kullanan yeni bir elektroporasyon cihazı geliştirdik. Kılcal elektroporasyon sistemi, küçük bir yüzey alanına sahip olan tel tipi elektrotu nedeniyle elektroporasyon sırasında hücre ölümünü önemli ölçüde azaltmıştır. Deneysel sonuçlar ayrıca hücre canlılığının elektroporasyon sırasında elektroliz tarafından indüklenen pH değişikliğine bağlı olduğunu gösterdi. Ek olarak, basit pipetleme ile birlikte uzun ve dar bir kılcal borunun kullanılması, 24 numune ile farklı koşullar altında bile elektroporasyon işleminin toplam süresini 15 dakikaya kadar kısalttı. Bu sonuçlar, geleneksel bir elektroporasyon sistemi ile karşılaştırılarak desteklenmiştir. HeLa ve COS-7 gibi genel hücre dizilerinde %80'den fazla yüksek transfeksiyon oranına sahip olan kapiler sistem kullanımı ile transfeksiyon oranı ve hücre canlılığı arttırılmıştır. kök veya birincil hücreler gibi transfekte hücreler. Bu çalışmada kullanılan tüm hücre tiplerinde canlılık yaklaşık %70-80 idi.


Transfeksiyon vs Elektroporasyon

Viral veya viral olmayan reaktif bazlı transfeksiyon yöntemleri veya elektroporasyon gibi daha modern alet bazlı yöntemler olsun, teorik olarak sonuçlar aşağı yukarı benzer olmalıdır. Oraya giden yol ne olursa olsun, hedef aynı olmalıdır. Ancak, hepimizin bildiği gibi, durum her zaman böyle değildir. Her iki yöntem de sonuç verebilir. Niye ya? Ve hangi yöntem en iyisidir?

Esneklik açısından, her iki yöntem de süreçte küçük bir varyasyona izin verir. Her ikisi de nihai olarak istenen sonucu elde etmek için farklı uygulamaların kullanılmasını sağlar, ancak özellikle belirli uygulamalar için kesin bir eğilim görmeye başlıyoruz. Örneğin transfeksiyon için lipopleksler gibi viral olmayan vektörlerin viral vektörlerden daha başarılı olduklarına ve daha düşük risk faktörlerine sahip olduklarına inanılmaktadır. Ve elektroporasyonda, tek hücreli elektroporasyon prosesleri (SCEP), daha yüksek hücre canlılığı, daha fazla transfeksiyon verimliliği ve daha düşük bir kontaminasyon oranı nedeniyle, toplu elektroporasyon proseslerine (BEP) göre tipik olarak tercih edilir.

Yöntemlerin Karşılaştırılması

Her yöntem ne kadar iyi çalışıyor? Bir bütün olarak transfeksiyon söz konusu olduğunda, hücre canlılığı ve hücre toksisitesi birincil endişelerdir. Her iki süreç de hücre canlılığının azalması açısından risk altındadır. Transfeksiyon, özellikle de yanlış transfeksiyon reaktifi oranı, yüzde 70 veya daha düşük yoğunluklu hücrelerin kullanımı ve yetersiz transfeksiyon reaktifi depolaması (39.2 derece olması gerekir) nedeniyle. Elektroporasyonda hücre canlılığı büyük ölçüde dalga biçimlerine, alan kuvvetine, küvet boşluk boyutuna, hücre çapına, sıcaklığa, darbe uzunluğuna ve darbe sayısına bağlıdır, ancak daha birçok faktörden etkilenebilir.

Risk faktöründeki birincil fark, hücre toksisitesine bakıldığında ortaya çıkar. Bir elektroporatör kullanmanın en belirgin ve iyi duyurulan avantajlarından biri, elbette, bu alete dayalı proseslerin, hücre toksisitesi dahil olmak üzere viral veya viral olmayan reaktif bazlı transfeksiyonun birçok ana avantajından kaçınmayı başarmasıdır. Ne yazık ki, hücre toksisitesi hala reaktif bazlı transfeksiyonda dikkate alınması gereken önemli bir faktördür. Hücre toksisitesi sonuçları önemli ölçüde etkileyebilir ve bazı reaktifler, özellikle lipozomal transfeksiyon ajanları, hücre regülasyonunu etkileyen stres tepki yollarını aktive etmek için iyi bilinir.

Her iki yöntem de hem DNA hem de mRNA transferine izin verirken, her iki tekniğin de her zaman dikkate alınması gereken avantaj ve dezavantajları vardır. Örneğin, elektroporasyonun ana avantajı, hücrelerdeki bölünmeler ve değişiklikler nedeniyle reaktif bazlı transfeksiyonda bulguların kopyalanması zor olabilirken, yüksek düzeyde tekrarlanabilirliğe sahip olmasıdır. Öte yandan, reaktif bazlı transfeksiyon, özellikle kalsiyum fosfat veya katyonik polimerler kullanıldığında çok daha uygun maliyetli bir çözümdür. İki işlem arasındaki hücre hasadı için zaman farkları ihmal edilebilir düzeydedir.

Hangi transfeksiyon yöntemi daha üstündür? Cevaplaması zor bir soru. Bununla birlikte, artık birçoğunun reaktif bazlı transfeksiyon yerine elektroporasyonu tercih ettiği bir sır değil, çünkü reaktif bazlı transfeksiyonun sahip olduğu kısıtlamalardan, özellikle de hedeflenebilecek hücre tipi bakımından aynı seviyede yoksundur. Ayrıca, reaktif bazlı transfeksiyonla eklenen DNA'nın uzunluğundaki sınırlamalar ve biyogüvenlik ile ilgili ortaya çıkan sorunlar nedeniyle bir kayma görüyoruz. Ancak bu, reaktif bazlı transfeksiyonun öldüğü anlamına gelmez. Ne münasebet. Aslında, transfeksiyondaki en yeni eğilimlerden biri, verimliliği ve yaşayabilirliği artırmak ve toksisiteyi ve diğer riskleri azaltmak için teknikleri hibritleştirmektir.

VitaScientic'te, sizin için en iyi olana karar verdiğiniz seçenek ne olursa olsun çözümler sağlayabiliriz.
Yeni ve yenilikçi Celetrix sızdırmaz tüplü Elektroporasyon Sistemi hakkında daha fazla bilgi edinmek için: Burayı tıklayın >>
Sınıfının en iyisi DNA-In&trade ve mRNA-In&trade Transfeksiyon Reaktiflerinin tam listesini görmek için: Burayı tıklayın >>


Videoyu izle: DNAnın Klonlanması ve Rekombinantı Fen Bilimleri Biyoloji (Haziran 2022).